Efecto de la inclusión dietética de hidrolizado de camarón sobre el crecimiento y eficiencia alimenticia del robalo blanco
DOI:
https://doi.org/10.61117/ipsumtec.v7i1.283Palabras clave:
cáscara y cabeza de camarón, hidrólisis enzimática, bromelina, Centropomus viridisResumen
Los hidrolizados de residuos de camarón (HRC) son usados para mejorar el rendimiento productivo de diferentes especies de peces. Este estudio determinó el efecto de la sustitución dietética de proteína de harina de pescado (HP) por hidrolizado de residuos de camarón (HRC) sobre el crecimiento, la eficiencia alimenticia y la composición corporal de juveniles de robalo blanco del pacífico, Centropomus viridis. Los residuos de camarón fueron tratados enzimáticamente (bromelina) para obtener el HRC. Tres dietas isonitrogenadas (47-48% proteína) e isoenergéticas (18.81-19.25 kJ/ g) fueron formuladas por reemplazamiento del 0%, 4% y 6% de proteína de la HP con la HRC. Los peces (peso promedio inicial individual de 44 g) fueron alimentados con las dietas experimentales (n = 24 peces por dieta) por 45 días. El peso ganado (PG), la tasa específica de crecimiento (TEC), la tasa de conversión alimenticia (TCA), la tasa de eficiencia proteica (TEP), la supervivencia y la composición proximal inicial y final del cuerpo entero del robalo fueron analizados. Los peces alimentados con la dieta control (0% de HRC) presentaron los mejores resultados en crecimiento (PG y TEC) y eficiencia alimenticia (TCA e TEP). Los valores de TCA no mostraron diferencias significativas entre el tratamiento control y el tratamiento con inclusión del 4% de HRC. La TEP fue significativamente mayor en el tratamiento control, que en los tratamientos con inclusión de HRC. En general, las dietas con inclusión de HRC impactaron negativamente (p<0.05) en el crecimiento (PG y TEC) de los organismos. La supervivencia no fue afectada (p>0.05) por ninguno de los tratamientos. Los valores de lípidos y cenizas en el cuerpo entero del robalo, fueron mayores en el tratamiento control que en los tratamientos con inclusión de HRC. En conclusión, el HRC obtenido bajo estas condiciones y usado en este estudio, no tiene potencial para ser usado en el diseño de alimento para robalos. El resideño de la obtención del HRC podría funcionar en futuros estudios.
Descargas
Métricas
Citas
Arriaga-Hernández, D., Hernández, C., Martínez-Montaño, E., Ibarra-Castro, L., Lizárraga-Velázquez, E., Leyva-López, N., & Chávez-Sánchez, M. C. (2021). Fish meal replacement by soybean products in aquaculture feeds for white snook, Centropomus viridis: Effect on growth, diet digestibility, and digestive capacity. Aquaculture, 530, 735823.
Ibarra-Castro, L., Navarro-Flores, J., Sanchez-Tellez, J.L., Martinez-Brown, J.M., Ochoa- Bojorquez, L.A., Rojo-Cebreros, A.H., 2017. Hatchery production of pacific White snook at CIAD-Unity Mazatlan. Mexico. World Aquaculture 25. WWW.WAS.ORG.
Macal-Lopez, K.C., Velazquez-Velazquez, E., Rivera-Velazquez, G., 2013. Diversidad y traslape del nicho trofico de los robalos (Perciformes: Centropomidae) en la Reserva de la Biosfera La Encrucijada, Chiapas, Mexico. Lacandonia 7, pp. 91–98.
NRC, 2011. Nutrient Requirements of Fish and Shrimp, first ed. The National Academy Press, Washington DC.
Rana, K.J., Siriwardena, S., Hasan, M.R., 2009. Impact of rising feed ingredient prices on aquafeeds and aquaculture production. FAO. Paper. 541 Fisheries and Aquaculture Technical. FAO, Rome, p. 63. Paper. 541.
Krishnan, H.B., Jez, J.M., 2018. The promise and limits for enhancing sulfur-containing amino acid content of soybean seed. Plant Science. 272, pp. 14–21. https://doi.org/10.1016/ j.plantsci.2018.03.030.
Mathew, G. M., Mathew, D. C., Sukumaran, R. K., Sindhu, R., Huang, C. C., Binod, P., & Pandey, A. (2020). Sustainable and eco-friendly strategies for shrimp shell valorization. Environmental Pollution, 267, 115656.
Wani, A. K., Akhtar, N., Rahayu, F., Suhara, C., Anjli, A., Chopra, C., & Américo-Pinheiro, J. H. P. (2023). Eco-friendly and safe alternatives for the valorization of shrimp farming waste. Environmental Science and Pollution Research, pp. 1-30.
Nirmal, N. P., Santivarangkna, C., Rajput, M. S., & Benjakul, S. (2020). Trends in shrimp processing waste utilization: An industrial prospective. Trends in Food Science & Technology, 103, pp. 20-35.
Quintana-López, A., Hernández, C., Palacios, E., Manzano-Sarabia, N., & Hurtado-Oliva, M. A. (2021). Do by-products derived from farming and wild shrimp contain the same quantity of astaxanthin? Journal Crustacean Biology, 4 (1), pp. 1–3.
Bui, H. T. D., Khosravi, S., Fournier, V., Herault, M., & Lee, K. J. (2014). Growth performance, feed utilization, innate immunity, digestibility and disease resistance of juvenile red seabream (Pagrus major) fed diets supplemented with protein hydrolysates. Aquaculture, 418, pp. 11-16.
Gunathilaka, B. E., Khosravi, S., Shin, J., Shin, J., Herault, M., Fournier, V., & Lee, K. J. (2021). Evaluation of shrimp protein hydrolysate and krill meal supplementation in low fish meal diet for red seabream (Pagrus major). Fisheries and Aquatic Sciences, 24 (3), pp. 109-120.
Costa‐Bomfim, C. N., Silva, V. A., Bezerra, R. D. S., Druzian, J. I., & Cavalli, R. O. (2017). Growth, feed efficiency and body composition of juvenile cobia (Rachycentron canadum Linnaeus, 1766) fed increasing dietary levels of shrimp protein hydrolysate. Aquaculture Research, 48 (4), pp. 1759-1766.
Teoh, C. Y., & Wong, Y. Y. (2021). Use of fish and shrimp hydrolysates as dietary supplements to increase feeding and growth of juvenile striped catfish (Pangasius hypophthalmus). Aquaculture International, 29 (4), pp. 1885-1894.
Rashidian, G., Abedian Kenari, A., & Nikkhah, M. (2021). Evaluation of antioxidative and antibacterial activities of fractionated hydrolysate from shrimp Litopenaeus vannamei head wastes against aquatic pathogenic bacteria. Aquaculture Research, 52 (8), pp. 3696-3704.
AOAC, (2011). Official Methods of Analysis of AOAC International. MD, 18th ed. Association of Official Analytic Chemists, USA.
Younes, I., Ghorbel-Bellaaj, O., Nasri, R., Chaabouni, M., Rinaudo, M., & Nasri, M. (2012). Chitin and chitosan preparation from shrimp shells using optimized enzymatic deproteinization. Process Biochemistry. 47, pp. 2032–2039.
Cho, C.Y., Slinger, S.J., & Bayley, H.S. (1982). Bioenergetics of salmonid fishes: energy intake, expenditure and productivity. Comparative Biochemistry Physiology. 73 (1), 25–41. https://doi.org/10.1016/0305-0491(82)90198-5.
Ibarra-Castro, L., & Alvarez-Lajonchere, L., (2011). GnRHa-induced multiple spawns and volition spawning of captive spotted rose snapper, Lutjanus guttatus, at Mazatlan, Mexico. Journal World Aquaculture Society. 42 (4), 564–574. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2011.00499.x.
Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999, especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de animales de laboratorio.
Costa-Bomfim, C. N., Silva, V. A., Bezerra, R. de S., Druzian, J. I & Cavalli, R. O. (2016). Growth, feed efficiency and body composition of juvenile cobia (Rachycentron canadum Linnaeus, 1766) fed increasing dietary levels of shrimp protein hydrolysate. Aquaculture Research, 1-8. doi:10.1111/are.13013.
Teoh, C. Y., & Wong, Y. Y. (2021). Use of fish and shrimp hydrolysates as dietary supplements to increase feeding and growth of juvenile striped catfish (Pangasius hypophthalmus). Aquaculture International, 29 ,1885–1894. https://doi.org/10.1007/s10499-021-00725-2.
Gunathilaka, B. E., Khosravi, S., Shin, J., Shin, J., Herault, M., Fournier, V., & Lee, K. J. (2021). Evaluation of shrimp protein hydrolysate and krill meal supplementation in low fish meal diet for red seabream (Pagrus major). Fish Aquatic Science, 24 (3):109-120. https://doi.org/10.47853/FAS.2021.e11
Osuna-Salazar, A., Hernández, C., Lizarraga-Velázquez, C. E., Sánchez Gutiérrez, E. Y., Hurtado-Oliva, M. A., Benitez-Hernandez, A. & Ibarra-Castro, L. (2023). Improvement in spotted rose snapper growth and skin coloration after incorporation of shrimp head meal in diet. Aquaculture Reports, 30, 1-8. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2023.101599.
Sekimoto, A., Ohira, T., Shigematsu, A., Okumura, T., Mekuchi, M., Toyota, K., Mishima, H., Kawamura, R, Hatano, K., Kawago, U., Kitani, Y., Sekiguchi, T., Amornsakun, T., Hirayama, J., Hattori, A., Matsubara, H., & Suzuki, N. (2022). Análisis funcional de un péptido matriz implicado en la calcificación del exoesqueleto del langostino kuruma, Marsupenaeus japonicus. Aquaculture, 559. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738437.
Chun, S., Chun, S., Bamba, T., Suyama, T., Ishijima, T., Fukusaki, E., Abel, K., & Nakai, Y. (2016). A High Phosphorus Diet Affects Lipid Metabolism in Rat Liver: A DNA Microarray Analysis. PLOS ONE, 1-8. DOI:10.1371/journal.pone.0155386.
Huttunen, M. M., Tillman, I., Viljakainen, H. T., Tuukkanen, J., Peng, Z., Pekkinen, M., & Lamberg‐Allardt, C. J. (2007). High dietary phosphate intake reduces bone strength in the growing rat skeleton. Journal of Bone and Mineral Research, 22 (1), 83-92.
Ayoub, J. J., Samra, M. J. A., Hlais, S. A., Bassil, M. S., & Obeid, O. A. (2015). Effect of phosphorus supplementation on weight gain and waist circumference of overweight/obese adults: a randomized clinical trial. Nutrition & diabetes, 5 (12), e189-e189.
Friedman M. I. (2007). Obesity and the hepatic control of feeding behavior. Drug News Perspect; 20, 573–578.
Grundmann, S.M., Ress, K., Zimmermann, L., Höring, M., Liebisch, G., Most, E., Ringseis, R., & Eder, K. A. (2023). High-Phosphorus Diet Moderately Alters the Lipidome and Transcriptome in the Skeletal Muscle of Adult Mice. Nutrients, 15, 3734. https://doi.org/10.3390/ nu15173734.
Sugiura, S. H., Dong, F. M., & Hardy, R. W. (2000). Primary responses of rainbow trout to dietary phosphorus concentrations. Aquaculture Nutrition, 6 (4), 235–245. doi:10.1046/j.1365-2095.2000.00142.x
Abuduli, M., Ohminami, H., Otani, T., Kubo, H., Ueda, H., Kawai, Y., & Taketani, Y. (2016). Effects of dietary phosphate on glucose and lipid metabolism. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism, 310 (7), E526-E538
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2024 Guillermo Antonio Osuna-Lizárraga, Cynthia Esmeralda Lizárraga-Velázquez, Amada Yerén Escobedo- Lozano, Crisantema Hernández

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
