EFECTO  
DE  
DIFERENTES  
SUSTRATOS,  
MICROORGANISMOS  
Y
BIOESTIMULANTES EN LA REPRODUCCIÓN DE PLÁNTULAS DE FRESA  
(Fragaria L.)  
EFFECT  
OF  
DIFFERENT  
SUBSTRATES,  
MICROORGANISMS,  
AND  
BIOSTIMULANTS ON THE REPRODUCTION OF STRAWBERRY SEEDLINGS  
(Fragaria L.)  
García López Luis Adolfo1, Ortega López Eric1, Solís Gordillo Luis Arturo1,  
Márquez Juárez Jorge2, Espinosa Velasco Sergio3  
https://doi.org/10.61117/ipsumtec.v9i1.452  
1Tecnológico Nacional de México/ Instituto Tecnológico de Comitán, luisgar213347@gmail.com, https://orcid.org/0009-  
0008-3739-9760  
1Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico de Comitán, ej25034@gmail.com, https://orcid.org/0009-0009-2654-  
0623  
1Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico de Comitán, luis.sg@comitan.tecnm.mx, https://orcid.org/0000-  
0003-2486-7162  
2Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico de Comitán, jorge.mj@comitan.tecnm.mx, https://orcid.org/0009-  
0005-5690-592X  
3Tecnológico Nacional de México/Instituto Tecnológico de Comitán, sergio.ev@comitan.tecnm.mx, https://orcid.org/0000-  
0003-0986-4027  
Palabras Clave-- Bioestimulantes, colonización,  
desarrollo, micorrizas, plántulas, sustratos.  
Resumen -- En el Laboratorio de Innovación  
Tecnológica en Agricultura (Lab-ITA), Instituto  
Tecnológico de Comitán, se evaluó el efecto de tres  
sustratos (S1: 10% humus + 70% suelo agrícola +  
20% tierra de monte; S2: 20% humus + 60% suelo  
agrícola + 20% tierra de monte; S3: 10% humus +  
80% suelo agrícola + 10% tierra de monte), dos  
bioestimulantes (Raizorg® y GreenFish®) y dos  
Abstract -- At the Laboratory of Technological  
Innovations  
in  
Agriculture  
(Lab-ITA),  
Technological Institute of Comitán, the combined  
effect of three substrates (S1: 10% humus + 70%  
agricultural soil + 20% forest soil; S2: 20% humus  
+ 60% agricultural soil + 20% forest soil; S3: 10%  
humus + 80% agricultural soil + 10% forest soil),  
two biostimulants (Raizorg® and GreenFish®) and  
two microorganisms (arbuscular mycorrhizae and  
Rhizobium spp.) A completely randomized design  
with a 3×2×2 factorial arrangement, 12 treatments,  
and 14 replicates was used. Evaluated variables  
included number of leaves, plant height, crown  
diameter, root length and volume, fresh and dry  
biomass, and mycorrhizal colonization percentage.  
microorganismos  
(micorrizas  
arbusculares  
y
Rhizobium spp.). El diseño experimental fue  
completamente al azar con arreglo factorial 3x2x2,  
con 12 tratamientos y 14 repeticiones. Las variables  
evaluadas fueron: número de hojas, diámetro de  
corona, altura de planta, longitud y volumen  
radicular, biomasa en peso fresco y seco, y  
porcentaje de colonización de micorrizas en raíz.  
Los datos se analizaron mediante ANOVA y prueba  
de Tukey (α = 0.05 y 0.10) en el software R. El  
tratamiento 7 (S2 + Raizorg + micorrizas) destacó  
con los mayores valores en altura (15.38 cm),  
número de hojas (12.77), peso fresco (28.95 gr) y  
peso seco (6.88 gr). El tratamiento 11 (S3 + Raizorg  
+ micorrizas) registró la mayor longitud radical  
(20.92 cm) y colonización micorrízica (60%). Las  
Data were analyzed by ANOVA and Tukey’s test (α  
= 0.05 and 0.10) using R software. Treatment T7 (S2  
+ Raizorg + mycorrhizae) achieved the highest  
values for plant height (15.38 cm), number of leaves  
(12.77), fresh weight (28.95 g), and dry weight (6.88  
g). Treatment T11 (S3 + Raizorg + mycorrhizae)  
recorded the greatest root length (20.92 cm) and  
micorrizas  
superaron  
significativamente  
a
mycorrhizal  
colonization  
(60%).Mycorrhizae  
Rhizobium en promoción de altura y biomasa aérea  
(p= 0.0284). La interacción entre factores fue clave:  
la combinación Raizorg + micorrizas maximizó el  
desarrollo, mientras que Raizorg + Rhizobium  
resultó en los desempeños más bajos.  
significantly outperformed Rhizobium in promoting  
plant height and aerial biomass (p = 0.0284). Factor  
interactions were critical: Raizorg + mycorrhizae  
maximized growth, whereas Raizorg + Rhizobium  
yielded the poorest performance.  
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Key  
words--  
Biostimulants,  
colonization,  
fines de producción son solo una fracción del  
conjunto de técnicas y herramientas con las que  
contamos durante esta transición mencionada hacia  
una agricultura sostenible [4]. Los bioestimulantes  
development, mycorrhizae, seedlings, substrates.  
INTRODUCCIÓN  
se  
definen  
como  
material  
orgánico  
o
microorganismos que mejoran la eficiencia  
nutricional, rasgos de calidad y crecimiento de las  
plantas, adicionalmente, brindan protección ante  
diversas situaciones de estrés. El efecto positivo que  
los bioestimulantes generan en los cultivos se debe  
principalmente a los compuestos bioactivos que  
contienen y que tienen influencia directa en la  
La agricultura se enfrenta a graves problemas de  
degradación de suelos, el sistema de cultivo  
intensivo, así como el desequilibrio en el uso de  
fertilizantes son los factores principales que  
provocan desbalance de nutrientes, disminuyen la  
fertilidad del suelo, bajan la productividad y reducen  
la calidad de los alimentos [1]. La transición hacia  
sistemas agrícolas sostenibles exige la integración  
de insumos biológicos que mejoren la eficiencia del  
uso de recursos y reduzcan la dependencia de  
productos químicos [2]. En este contexto, los  
sustratos alternativos, microorganismos benéficos y  
mejora  
del  
crecimiento  
vegetal  
[8].  
Una  
consideración primordial para la producción  
sostenible y la seguridad alimentaria se refiere al  
impacto desfavorable del calentamiento global o  
cambio climático, que muchos científicos califican  
de emergencia climática. Para mitigar estos efectos  
adversos se ha recomendado hacer uso y promover  
los mecanismos naturales de que disponen las  
plantas para aclimatarse a los cambios ambientales  
y sortear el estrés [2].  
bioestimulantes  
emergen  
como  
pilares  
fundamentales para el fortalecimiento de la  
agroecología [3]. Una consideración primordial para  
la producción sostenible y la seguridad alimentaria  
se refiere al impacto negativo del calentamiento  
global o cambio climático. El impacto adverso de  
esta emergencia sobre la seguridad alimentaria es  
resultado de las modificaciones en los extremos de  
temperatura y la distribución de precipitaciones y  
humedad atmosférica que hemos atestiguado desde  
hace años, los cuales causan estrés en los cultivos.  
Por su parte, los microorganismos promotores del  
crecimiento vegetal, como las micorrizas, mejoran  
la absorción de fósforo y confieren tolerancia al  
estrés abiótico [9]. Las rizobacterias, aunque  
tradicionalmente asociadas a las leguminosas,  
también han mostrado efectos positivos en cultivos  
no leguminosos, incluyendo fresa [10]. Además, los  
bioestimulantes contienen compuestos bioactivos  
que modulan la fisiología vegetal, potencian el  
enraizamiento, la fotosíntesis y la síntesis de  
biomasa [2-8]. Las comunidades microbianas en los  
suelos conducen entre 80 y 90% de los procesos  
biológicos desarrollados en el suelo, debido a sus  
múltiples nichos ecológicos, entre los que destacan  
la mitigación de alteraciones exógenas, promoción  
del crecimiento vegetal, actividad de biocontrol,  
ciclo de nutrientes, producción de biomasa vegetal,  
estructura y fertilidad del suelo, y la degradación de  
compuestos tóxicos [11]. Estudios recientes han  
demostrado que la inoculación con Rhizobium y  
Phyllobacterium incrementa el número de estolones,  
el tamaño del fruto y la concentración de vitamina C  
en fresa [10]. Por su parte, los sustratos influyen  
Para mitigar estos efectos adversos se ha  
recomendado hacer uso y promover los mecanismos  
naturales de que disponen las plantas para  
aclimatarse a los cambios ambientales y sortear el  
estrés [1].  
El cultivo de fresa (Fragaria L.) ha incrementado su  
relevancia en México por su alto valor comercial y  
nutricional, siendo el tercer exportador mundial de  
fresa fresca y abasteciendo el 87.79% de las  
importaciones de Estados Unidos [4]. Por lo  
anterior, es necesario ampliar la producción de  
plántulas de fresa libres de patógenos. La razón se  
basa en que la obtención de plántulas sanas proviene  
de un almácigo donde encuentran las condiciones  
físico - químicas y nutrientes necesarios para su  
desarrollo, que garantiza la obtención de una  
producción significativa [5]. Sin embargo, la calidad  
de las plántulas iniciales es un factor limitante en la  
productividad, ya que depende de un “vivero” bien  
gestionado con condiciones óptimas. Los sustratos  
influyen directamente en el anclaje radicular y la  
disponibilidad de nutrientes [6]. Materiales locales  
como tierra de monte y humus de lombriz ofrecen  
ventajas en retención de humedad y materia  
orgánica, reduce costos y fomenta la circularidad de  
recursos agrícolas [7].  
directamente en el anclaje radicular  
y
la  
disponibilidad de nutrientes [6]. Materiales locales  
como tierra de monte y humus de lombriz ofrecen  
ventajas en retención de humedad y materia  
orgánica, reducen costos y fomentan la circularidad  
de recursos agrícolas [7]. Según [7], la tierra de  
monte también conocido como mantillo forestal,  
reduce  
la  
insolación,  
disminuye  
la  
evapotranspiración superficial y aumenta la materia  
orgánica y la actividad biológica cerca de la  
superficie, favoreciendo una mayor proliferación de  
raíces. Por su parte, el humus de lombriz aporta N  
(1-2.6%), P (2-8%), K (1-2.25%) y un pH neutro  
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Actualmente, el uso de sustratos, microorganismos  
y bioestimulantes en las diferentes modalidades y  
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(6.8-7.2), lo que lo convierte en una enmienda  
orgánica altamente valorada [12].  
80% suelo agrícola + 10% tierra de monte), el factor  
B bioestimulante (Raizorg® y GreenFish®) y el  
factor C microorganismos (micorrizas, Rhizobium).  
Se generaron 12 tratamientos con 14 repeticiones  
cada uno, es decir 168 unidades experimentales,  
cada unidad constó de una bolsa de polietileno de  
17x17 cm con una planta. La relación de los  
tratamientos evaluados se muestra en la tabla 2.  
El suelo agrícola, aunque tradicionalmente utilizado  
como medio de cultivo directo, también puede  
emplearse como componente principal en mezcla de  
sustrato para la producción de plántulas, siempre  
que se complemente con materia orgánica.  
Tabla 1. Relación de tratamientos evaluados.  
En el presente estudio, el suelo agrícola fue  
recolectado en la Ranchería Pamala en Comitán de  
Domínguez, Chiapas siendo este del tipo franco-  
arcilloso-limoso, con buena capacidad de retención  
de nutrientes, pero limitada porosidad y baja materia  
orgánica. Por ello, se combinó con humus de  
lombriz y tierra de monte para mejorar su estructura  
física, aireación y actividad biológica como lo  
recomienda [7]. Este enfoque permite aprovechar  
recursos locales, reducir costos de producción y  
fomentar sistemas de producción más sostenibles,  
especialmente en zonas rurales donde los sustratos  
comerciales (como turba o fibra de coco) son de  
difícil acceso o económicamente inviables [5,6]. En  
Chiapas, las condiciones agroclimáticas son  
adecuadas para el cultivo de fresa [13], pero  
persisten desafíos relacionados con la baja calidad  
de plántulas y el uso excesivo de agroquímicos en  
muchas partes del país [4]. Aunque existen  
antecedentes del uso individual de estos insumos,  
son escasos los estudios integrados que evalúen sus  
interacciones en condiciones locales.  
Tratamientos  
Abreviación  
(T1) Sustrato 1 + Greenfish + S1 + B1 +  
Micorrizas M1  
(T2) Sustrato 1 + Greenfish + S1 + B1 +  
Rhizobium  
M2  
(T3) Sustrato 1+ Raizorg  
Micorrizas  
+
+
S1 + B2 +  
M1  
(T4) Sustrato 1+ Raizorg  
Rhizobium  
S1 + B2 +  
M2  
(T5) Sustrato 2+ Greenfish + S2 + B1 +  
Micorrizas M1  
(T6) Sustrato 2+ Greenfish + S2 + B1 +  
Rhizobium M2  
Por lo tanto, el objetivo del estudio fue evaluar el  
efecto de diferentes sustratos, microorganismo y  
bioestimulantes en el desarrollo de plántulas de  
fresa.  
(T7) Sustrato 2 + Raizorg + S2 + B2 +  
Micorrizas  
M1  
(T8) Sustrato 2+ Raizorg  
Rhizobium  
+
S2 + B2 +  
M2  
DESARROLLO  
(T9) Sustrato 3 + Greenfish + S3 + B1 +  
Micorrizas M1  
Metodología  
El experimento se desarrolló en condiciones de  
malla sombra en el Lab-ITA del Instituto  
Tecnológico de Comitán (16°13'31"N, 92°05' 21"O;  
1,582 msnm) como se muestra en la Figura 1.  
(T10) Sustrato 3 + Greenfish + S3 + B1 +  
Rhizobium M2  
(T11) Sustrato 3 + Raizorg + S3 + B2 +  
Micorrizas M1  
(T12) Sustrato 3 + Raizorg + S3 + B2 +  
Rhizobium M2  
Fuente: Elaboración propia (2026)  
Figura 1. Croquis del diseño experimental.  
Fuente: Elaboración propia (2026)  
Descripción del material genético  
La variedad utilizada fue Albión, pertenece a un  
grupo con una menor respuesta al fotoperiodo, es  
decir, requieren de temperatura adecuadas (sobre  
12°C en suelo) para desarrollar yemas florales [13].  
Se utilizó un diseño completamente al azar con  
arreglo factorial 3x2x2, donde el factor A fue  
sustrato (S1: 10% humus + 70% suelo agrícola +  
20% tierra de monte; S2: 20% humus + 60% suelo  
agrícola + 20% tierra de monte; S3: 10% humus +  
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Esta variedad posee alta resistencia a condiciones  
meteorológicas adversas y a enfermedades como  
antracnosis, Verticillium y Phytophtora, y plagas  
como araña roja [13]. Además, presenta crecimiento  
inicial lento, pero estable, con frutos de color rojo  
intenso, pulpa firme y alto contenido de azucares  
(10-14º Brix) características deseables para  
mercados internacionales [14].  
(cipermetrina,  
fungicidas  
imidacloprid,  
(Trikoplant®,  
spirotetramat)  
y
Serenade®,  
carbendazim/Benomilo, Curabac y ExterBac) de  
forma preventiva y curativa. Entre las plagas  
monitoreadas destacan trips (Frankliniella spp.),  
ácaro araña (Tetranychus urticae) y mosca blanca  
(Bemisia tabaci), mientras que las enfermedades  
incluyeron  
Botrytis  
Cinerea,  
Phytophthora  
cactorum y antracnosis (colletotrichum acutatum).  
Manejo de cultivo o experimento  
Previo al establecimiento del experimento, el área  
fue desmalezada mediante la aplicación de  
herbicidas (glifosato y paraquat a 10 mL·L⁻¹ y  
atrazina a 1 mL·L⁻¹) días después se cubrió con  
ground cover. Los estolones de fresa variedad  
Albión se recolectaron de plantaciones madre en el  
Lab-ITA del Instituto Tecnológico de Comitán y,  
antes del trasplante del semillero, se sumergieron en  
una solución enraizante (Nutrí Root, Alga Root,  
Fulvidal y Turbo Amino). Posteriormente se  
trasplantaron a un semillero propio del Lab-ITA y se  
fertilizaron con una forma 20-30-10 a 5000 ppm a la  
semana de ser colocados. De manera preventiva, se  
hicieron dos aplicaciones de Azubec (10 mL·L⁻¹) de  
manera de foliar.  
Programa de aplicación de tratamientos  
Las aplicaciones de los bioestimulantes  
y
microorganismos se realizaron según cronogramas  
específicos: Raizorg® vía drench, 1–2 L·ha⁻¹ cada  
10 días; GreenFish® en aplicaciones alternas  
foliar/drench 2 L·ha⁻¹ cada 10 días; micorrizas 3  
kg·ha⁻¹ aplicadas a los 16 días después del  
trasplantes y refuerzos cada 10 días; y Rhizobium 1L  
en 20L de agua (pH ajustado), aplicado cada 20 días  
vía drench.  
Variables evaluadas  
A los 61-65 días después del trasplante se midieron:  
número de hojas, diámetro de corona (vernier  
digital), altura de planta usando una (regla  
graduada), longitud, y volumen radicular este fue  
determinado con el método de desplazamiento de  
agua usado por [15], para determinar biomasa fresca  
y seca se pesaron las plantas en una balanza  
analítica marca Adam LAB 254i; y se llevaron a una  
estufa Universal UN de Memmert por 72 hrs a 65  
ºC, hasta alcanzar un peso constante siguiendo la  
metodología de [16], finalmente el porcentaje de  
colonización micorrízica fue determinado por el  
método de [17]; y para la cuantificación del  
porcentaje de colonización micorrízica se usó el  
método de [18] con la siguiente fórmula:  
Colonización (%) = Segmentos colonizados /  
Segmentos observados X 100.  
Preparación de sustratos  
Los sustratos utilizados fueron recolectados de  
zonas específicas: la tierra de monte en la  
Independencia, Chiapas; el humus de lombriz  
adquirido de un productor de San Antonio el  
Milagro, Comitán; y el suelo agrícola (franco-  
arcilloso-limoso) de la Ranchería Pamala también  
del municipio de Comitán siendo este del tipo.  
Todos los sustratos fueron cribados para eliminar  
impurezas y mezclados en proporciones definidas:  
●
●
●
S1: 10% humus + 70% suelo agrícola  
+20% tierra de monte  
S2: 20% humus + 60% suelo agrícola +  
20% tierra de monte  
S3: 10% humus + 80% suelo agrícola +  
10% tierra de monte  
Análisis estadístico  
Los datos se analizaron mediante Software R [19]  
ANOVA y prueba de Tukey p≤ 0.05 y 0.10 [20];  
se verificaron los supuestos de normalidad (Shapiro-  
Wilk) y homocedasticidad de varianzas (Levene).  
Cada unidad experimental consistió en una bolsa de  
polietileno de 17x17 cm, pesada en una balanza  
digital de la marca Truper (capacidad de 5 kg), para  
garantizar uniformidad de volumen y en seguida se  
DISCUSIÓN Y ANÁLISIS DE RESULTADOS  
trasplantaron  
los  
estolones  
previamente  
aclimatados. El riego se aplicó mediante sistema por  
goteo (una piqueta por bosa).  
Los resultados del experimento confirman que el  
desarrollo vegetativo de las plántulas no responde de  
forma aditiva a los valores evaluados, sino que  
La fertilización inicial se realizó a los 13 días  
después del trasplante con una relación N-P-K de 2-  
3-1 (MAP, NKS Y Aporta N-30), seguida por una  
relación 3-1-1 a partir de la semana 4.  
depende  
específicas.  
críticamente  
de  
sus  
interacciones  
La figura 2 (α = 0.05) muestra una interacción  
significativa entre bioestimulante y microorganismo  
(fb x fc) en peso seco. Las líneas cruzadas indican  
que el efecto de Raizorg depende del tipo de  
microorganismo aplicado, con micorrizas, Raizorg  
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Control fitosanitario  
Se instalaron 9 trampas cromáticas amarillas  
untadas con miel. Se aplicaron insecticidas  
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eleva la altura a 15.38 cm y el peso seco a 6.88 gr  
(T7), sin embargo, cuando se aplica junto a  
Rhizobium reduce la biomasa a 1.30gr en peso seco  
(T4).  
especialización de Rhizobium en la formación de  
nódulos en leguminosas, donde fija nitrógeno  
atmosférico. En fresa, especie no nodulante, su  
efecto promotor del crecimiento es limitado en  
comparación con las micorrizas, que forman  
estructuras simbióticas (arbúsculos) que amplían la  
superficie de absorción radical [21,  
Esta incompatibilidad entre el producto Raizorg y el  
cóctel de Rhizobium sugiere una posible  
competencia fisiológica o antagonismo funcional en  
cultivos no leguminosos. Esto es coherente con la  
Figura 2. Interacción entre bioestimulante (fb) y microorganismo (fc) en el promedio de peso seco de plántulas  
de fresa.  
Fuente: Elaboración propia (2026).  
La superioridad de las micorrizas (p= 0.0284 en  
altura) respalda lo documentado por [21] quien  
menciona que la fresa es una especie altamente  
micotrofica, cuya respuesta fisiológica a Rhizobium  
es limitada, dado que este género está especializado  
en leguminosas [22].  
Rhizobium maximiza el volumen radical (8.20 cm3  
en T6), tal como lo reportan [23]. En contraste,  
Raizorg + Rhizobium dio los valores más bajos.  
De manera similar se observa que la figura 3 (α =  
0.10) revela que la combinación GreenFish +  
Figura 3. Gráfica de interacción entre Raizorg (B2) y Rhizobium (M2)  
Fuente: Elaboración propia (2026)  
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vegetativo, destacando el tratamiento T7 (S2 +  
Raizorg + Micorrizas) con los mayores valores en  
altura, número de hojas y biomasa (fresca y seca),  
mientras que el tratamiento T11 (S3 + Raizorg +  
Micorrizas) optimizó la arquitectura radical con la  
mayor longitud de raíz y porcentaje de colonización  
(60%).  
El tratamiento 11 destacó en longitud radical (20.92  
cm) y colonización micorrízica (60%), lo que  
sugiere una estrategia de exploración activa de suelo  
bajo condiciones de menor disponibilidad de  
materia orgánica. Este hallazgo es congruente con  
[24], quienes observaron respuestas radiculares  
superiores en frijol inoculado bajo estrés salino.  
La composición del sustrato influyó en la  
distribución de biomasa: un mayor contenido de  
humus (S2) favoreció la parte aérea, mientras que  
una mayor proporción de suelo agrícola (S3)  
incentivó la exploración radical. Asimismo, se  
Aunque no se alcanzó significancia estadística en el  
número de hojas (p= 0.0764), el tratamiento T3 (S1  
+ Raizorg + Micorrizas) registró el promedio más  
alto (12.77 hojas), mientras que T4 (S1+ Raizorg +  
Rhizobium) fue el más bajo (10.22 hojas),  
sugiriendo que las micorrizas podrían favorecer el  
desarrollo foliar.  
determinó  
significativamente  
que  
las  
a
micorrizas  
Rhizobium spp. en la  
superaron  
promoción de altura y biomasa aérea, lo cual es  
consistente con la naturaleza no leguminosa de la  
fresa. Se identificó una incompatibilidad fisiológica  
o antagonismo funcional entre el bioestimulante  
La tabla 2 presenta la matriz de correlación de  
Raizorg®  
y
Rhizobium, resultando en los  
Pearson entre las variables morfológicas  
y
desempeños más bajos cuando se combinaron, lo  
que sugiere evitar esta asociación en cultivos de  
fresa. Finalmente, la colonización micorrízica  
mostró una correlación positiva con variables  
aéreas, confirmando que la simbiosis mejora la  
eficiencia funcional del sistema radicular más que su  
extensión física.  
biométricas. Estas altas correlaciones confirman una  
fuerte integración funcional entre el sistema radical  
y aéreo: un mayor volumen radical facilita la  
absorción de agua y nutrientes como lo demuestra  
[25], lo que se traduce en mayor biomasa aérea,  
como lo demuestra [26]. Sin embargo, la  
colonización micorrízica no correlacionó con la  
longitud de raíz (r= 0.004, p=0.973), pero sí mostró  
asociaciones positivas con las variables aéreas (peso  
fresco= 0.45 y seco 0.48), esto indica que la  
simbiosis micorrízica mejora la eficiencia funcional  
del sistema radicular más que su extensión física, lo  
cual es consistente con la literatura sobre hongos  
micorrízicos arbusculares (HMA), que destacan su  
rol en la optimización del uso de recursos [26].  
Como líneas de investigación futura, se recomienda  
evaluar el efecto de los tratamientos óptimos  
identificados (T7 y T11) durante la etapa de  
producción de fruto, para determinar si los  
beneficios observados en la fase de plántula se  
traducen en mayor rendimiento y calidad de fruto.  
Asimismo, es necesario validar estos resultados bajo  
condiciones de campo que permitan considerar la  
interacción con factores ambientales variables.  
Tabla 2. Correlación entre variables de estudio  
Evaluar el efecto de los tratamientos óptimos  
identificados (T7 y T11) durante la etapa de  
producción de fruto, para determinar si los  
beneficios observados en la fase de plántula se  
traducen en mayor rendimiento y calidad de fruto.  
Realizar estudios bajo condiciones de campo que  
permitan validar los resultados obtenidos en  
condiciones  
considerando  
controladas  
la interacción  
de  
malla  
con  
sombra,  
factores  
Fuente: Elaboración propia (2026).  
ambientales variables.  
AGRADECIMIENTOS  
CONCLUSIONES  
El desarrollo vegetativo de las plántulas de fresa  
variedad Albión no responde de manera aditiva a la  
aplicación individual de insumos, sino que depende  
críticamente de las interacciones específicas entre  
sustrato, bioestimulante y microorganismo. Se  
concluye que la combinación de Raizorg® con  
micorrizas arbusculares maximiza el crecimiento  
Recepción: 19/12/2025 ǀ Aceptación: 11/03/2026 | Publicación: 15/04/2026  
Agradecemos al Instituto Tecnológico de Comitán  
por el apoyo logístico, infraestructura  
financiamiento para la realización de este estudio.  
y
A los asesores Dr. Luis Arturo Solís Gordillo e Ing.  
Sergio Espinoza Velasco por su orientación  
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académica y al Ing. Jorge Márquez Juárez, Al  
Instituto Tecnológico de Comitán por el espacio y  
recursos para la investigación. Así mismo, al equipo  
del Lab-ITA por su colaboración técnica.  
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Visualización  
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DOI:  
Luis Arturo Solís  
Gordillo «que apoya»  
10.1080/14620316.2000.11511303  
TABLA DE ROLES DE CONTRIBUCIÓN  
Luis Adolfo García  
López «igual»  
Eric Ortega López  
«igual»  
Rol  
Autor (es)  
Redacción  
(Borrador  
Original)  
Conceptualización  
Luis Arturo Solís  
Gordillo  
Redacción  
(Revisión y  
edición)  
Luis Adolfo García  
López «igual»  
Eric Ortega López  
«igual»  
Luis Adolfo García  
López «igual»  
Eric Ortega López  
«igual»  
Curación de datos  
Jorge Márquez Juárez  
«que apoya».  
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Metodología  
Luis Arturo Solís  
Gordillo «igual»  
Jorge Márquez Juárez  
«que apoya»  
Recepción: 19/12/2025 ǀ Aceptación: 11/03/2026 | Publicación: 15/04/2026  
IPSUMTEC9 ǀ Volumen 9 – N° 1 ǀ enero - junio 2026  
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